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西湖大學(xué)開(kāi)發(fā)相分離遞送技術(shù),重塑多種原代細(xì)胞CRISPR基因編輯治療新格局

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基因編輯技術(shù)CRISPR-Cas9被譽(yù)為“分子剪刀”,因其高效、精準(zhǔn)和可編程的特性,迅速成為生物醫(yī)學(xué)研究中的核心工具之一。這項(xiàng)革命性技術(shù)不僅極大地推動(dòng)了基礎(chǔ)生命科學(xué)的發(fā)展,也為遺傳病、腫瘤等重大疾病的治療提供了全新的策略。在眾多應(yīng)用方向中,各類(lèi)功能細(xì)胞(尤其是免疫細(xì)胞和干細(xì)胞)的基因改造尤其受到關(guān)注。例如,原代 T 細(xì)胞作為適應(yīng)性免疫系統(tǒng)的關(guān)鍵執(zhí)行者,是開(kāi)發(fā) CAR-T、TCR-T 等前沿細(xì)胞療法的重要載體;NK 細(xì)胞憑借其獨(dú)特的靶向殺傷機(jī)制,成為 CAR-NK 等新型免疫治療的熱點(diǎn)對(duì)象;而干細(xì)胞的基因編輯更是在再生醫(yī)學(xué)與多種難治性疾病的治療中展現(xiàn)出廣闊前景。對(duì)這類(lèi)原代細(xì)胞進(jìn)行精準(zhǔn)高效的基因編輯,已成為生物醫(yī)學(xué)研究及臨床轉(zhuǎn)化的重要前沿。

然而,盡管 CRISPR-Cas9 系統(tǒng)本身具備強(qiáng)大的編輯能力,其在原代免疫細(xì)胞和干細(xì)胞中的實(shí)際應(yīng)用仍面臨嚴(yán)峻挑戰(zhàn)。這些細(xì)胞來(lái)源于人體外周血、組織或特定分化階段,具有高度的生理敏感性和有限的體外擴(kuò)增能力。它們對(duì)環(huán)境變化極為敏感,容易發(fā)生凋亡、分化或功能耗竭,且細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)往往致密,對(duì)外源大分子物質(zhì)的攝入效率極低。這些共性生物學(xué)特性使得將 CRISPR 組件高效、安全地遞送進(jìn)細(xì)胞內(nèi)部成為制約基因編輯成功的關(guān)鍵瓶頸。

目前常用的遞送方法在各類(lèi)原代細(xì)胞中各有局限。脂質(zhì)體或陽(yáng)離子聚合物等化學(xué)轉(zhuǎn)染試劑在易轉(zhuǎn)染細(xì)胞系中可能表現(xiàn)良好,但在原代 T 細(xì)胞、NK 細(xì)胞或干細(xì)胞中往往效率低下且細(xì)胞毒性顯著;電穿孔技術(shù)雖能提高外源物質(zhì)的導(dǎo)入率,但強(qiáng)烈的電流脈沖會(huì)對(duì)細(xì)胞膜和細(xì)胞穩(wěn)態(tài)造成不可逆損傷,導(dǎo)致細(xì)胞存活率大幅下降、分化異?;蚬δ軉适В瑖?yán)重影響后續(xù)研究與治療應(yīng)用;病毒載體雖然轉(zhuǎn)導(dǎo)效率較高,卻存在插入突變風(fēng)險(xiǎn)、免疫原性反應(yīng)以及生產(chǎn)復(fù)雜、成本高等問(wèn)題,在干細(xì)胞編輯中尤其需考慮其長(zhǎng)期安全性,因此在臨床前研究中仍限制較多。

因此,如何在不損害細(xì)胞活力的前提下,實(shí)現(xiàn) CRISPR 基因編輯組件的高效遞送,已成為提升基因編輯效率和臨床應(yīng)用可行性的核心難題。理想的遞送系統(tǒng)應(yīng)兼具高轉(zhuǎn)染效率、低細(xì)胞毒性、良好的細(xì)胞功能維持以及臨床轉(zhuǎn)化潛力,才能滿(mǎn)足從基礎(chǔ)科研到治療開(kāi)發(fā)的多元需求。

一、CRISPR-Cas9工作機(jī)制:精準(zhǔn)的基因“剪刀”

CRISPR-Cas9 系統(tǒng)的發(fā)現(xiàn)源于對(duì)細(xì)菌免疫機(jī)制的研究。自然界中,細(xì)菌和古菌為抵御噬菌體等外來(lái)遺傳物質(zhì)的入侵,演化出一套基于 CRISPR 序列的記憶性防御系統(tǒng)。經(jīng)過(guò)科學(xué)改造,這一系統(tǒng)已被轉(zhuǎn)化為一種強(qiáng)大而靈活的基因編輯工具,廣泛應(yīng)用于基因敲除、插入、調(diào)控等多種操作。

關(guān)鍵組分

  • Cas9 蛋白:一種核酸內(nèi)切酶,負(fù)責(zé)切割 DNA 雙鏈。

  • sgRNA(單鏈向?qū)NA):引導(dǎo) Cas9 蛋白靶向特定基因序列。

編輯過(guò)程

  • 靶向定位sgRNA 通過(guò)堿基互補(bǔ)配對(duì),結(jié)合到目標(biāo) DNA 序列。

  • DNA 切割Cas9 在 sgRNA 引導(dǎo)下切割 DNA,形成雙鏈斷裂(DSB)。

  • DNA 修復(fù)細(xì)胞通過(guò)非同源末端連接(NHEJ)同源定向修復(fù)(HDR)修復(fù)斷裂,從而實(shí)現(xiàn)基因敲除或插入。

CRISPR-Cas9 系統(tǒng)的優(yōu)勢(shì)在于其高度的可編程性和靶向特異性,只需更換 sgRNA 序列即可靶向不同基因,極大提升了實(shí)驗(yàn)的靈活性與效率。然而,無(wú)論編輯設(shè)計(jì)多么精巧,若無(wú)法將其有效遞送至目標(biāo)細(xì)胞內(nèi)部,尤其是像原代免疫細(xì)胞及干細(xì)胞這類(lèi)“難轉(zhuǎn)染”細(xì)胞,再先進(jìn)的編輯策略也難以發(fā)揮其應(yīng)有作用。

二、ProteanFect?遞送Cas9基因編輯系統(tǒng)——原代免疫細(xì)胞、干細(xì)胞等基因編輯新策略

為突破原代免疫細(xì)胞、干細(xì)胞等難轉(zhuǎn)染細(xì)胞的基因編輯中的遞送瓶頸,西湖凝聚體西湖大學(xué)聯(lián)合開(kāi)發(fā)了 ProteanFect?CRISPRMax Ultra 轉(zhuǎn)染試劑盒。該系統(tǒng)基于創(chuàng)新的生物分子凝聚體技術(shù),專(zhuān)為高效遞送 RNP 復(fù)合物/Cas9 mRNA-sgRNA 復(fù)合物至難轉(zhuǎn)染的原代細(xì)胞(原代 T 細(xì)胞、B 細(xì)胞、NK 細(xì)胞、干細(xì)胞等)而設(shè)計(jì),展現(xiàn)出卓越的轉(zhuǎn)染效率與細(xì)胞兼容性,為免疫學(xué)與細(xì)胞治療研究提供了強(qiáng)有力的技術(shù)支持。

與傳統(tǒng)遞送方式不同,ProteanFect?不依賴(lài)脂質(zhì)包裹或電穿孔等物理化學(xué)手段,而是模擬細(xì)胞內(nèi)天然的相分離現(xiàn)象,利用功能性?xún)?nèi)源蛋白與 CRISPR-Cas9 基因編輯系統(tǒng)自發(fā)組裝形成動(dòng)態(tài)的生物分子凝聚體。這種凝聚體結(jié)構(gòu)能夠溫和地?cái)y帶 RNP 復(fù)合物/Cas9 mRNA-sgRNA 復(fù)合物,通過(guò)細(xì)胞的內(nèi)吞途徑進(jìn)入胞內(nèi),避免了劇烈處理對(duì)細(xì)胞造成的應(yīng)激損傷。

ProteanFect?遞送系統(tǒng)實(shí)現(xiàn)基因編輯的分子機(jī)制如下(圖1):

  • 凝聚體組裝:RNP/Cas9 mRNA-sgRNA 與 ProteanFect?內(nèi)源蛋白一起組裝成為凝聚體復(fù)合物;

  • 細(xì)胞攝取:凝聚體通過(guò)胞吞吸收,遞送進(jìn)入細(xì)胞內(nèi);

  • 胞內(nèi)釋放與轉(zhuǎn)運(yùn):復(fù)合物釋放并進(jìn)入細(xì)胞核與靶 DNA 結(jié)合;

  • 靶向編輯:精準(zhǔn)切割靶基因,實(shí)現(xiàn)高效基因編輯。

圖1. ProteanFect?RNP-based CRISPR及mRNA-based CRISPR遞送原理

這一遞送策略有效規(guī)避了電穿孔帶來(lái)的高細(xì)胞死亡率和病毒載體潛在的安全風(fēng)險(xiǎn),同時(shí)在編輯效率上優(yōu)于傳統(tǒng)化學(xué)試劑的轉(zhuǎn)染方法。更重要的是,使用 ProteanFect?處理后的原代細(xì)胞通常保持較高的存活率和功能完整性,有利于后續(xù)的功能驗(yàn)證、擴(kuò)增或回輸實(shí)驗(yàn)。該系統(tǒng)的操作極為簡(jiǎn)便,無(wú)需復(fù)雜的設(shè)備或繁瑣的預(yù)處理步驟。

ProteanFect?CRISPRMax Ultra的出現(xiàn),標(biāo)志著原代免疫細(xì)胞基因編輯正從“高難度操作”向“標(biāo)準(zhǔn)化流程”轉(zhuǎn)變。它不僅提升了實(shí)驗(yàn)的可重復(fù)性與成功率,也為大規(guī)模篩選、多基因編輯以及臨床前研究提供了可靠的技術(shù)平臺(tái)。

三、ProteanFect?CRISPRMax Ultra高效基因編輯各種原代細(xì)胞成功案例

1. 小鼠原代 T 細(xì)胞

利用ProteanFect?CRISPRMax Ultra 小鼠免疫細(xì)胞轉(zhuǎn)染試劑盒(貨號(hào):PT09)對(duì)小鼠原代 T 細(xì)胞進(jìn)行基因編輯:采用 Trac sgRNA/Cas9 蛋白(RNP)轉(zhuǎn)染的方案,結(jié)果如下圖 2 所示?;蚪M水平檢測(cè)(圖2左)顯示小鼠T細(xì)胞整體 DNA 突變率達(dá) 84.3%,蛋白水平檢測(cè)(圖2右)顯示蛋白敲低效率達(dá) 86.3%。

圖2. 使用ProteanFect?CRISPRMax Ultra小鼠免疫細(xì)胞轉(zhuǎn)染試劑盒對(duì)小鼠原代T細(xì)胞進(jìn)行基因編輯

2. 人原代 T 細(xì)胞

利用ProteanFect?CRISPRMax Ultra 轉(zhuǎn)染試劑盒(貨號(hào):PT08)對(duì)人原代 T 細(xì)胞進(jìn)行基因編輯:采用 TRAC sgRNA/Cas9 蛋白(RNP)轉(zhuǎn)染的方案,結(jié)果如下圖 3 所示?;蚪M水平檢測(cè)(圖2左)顯示人 T 細(xì)胞整體 TRAC 突變率達(dá) 80.1%,蛋白水平檢測(cè)(圖2右)顯示蛋白敲低效率達(dá) 85%。

圖3. 使用ProteanFect?CRISPRMax Ultra轉(zhuǎn)染試劑盒對(duì)人原代T細(xì)胞進(jìn)行基因編輯

3.iPSC 誘導(dǎo)多能干細(xì)胞

來(lái)自斯坦福大學(xué)的研究團(tuán)隊(duì)利用 ProteanFect?成功遞送 PE7 基因編輯系統(tǒng)至 PBMC 來(lái)源的 iPSC,并實(shí)現(xiàn)精準(zhǔn)點(diǎn)突變(c.757G>T),堿基替換效率達(dá) 55%,進(jìn)一步驗(yàn)證了該試劑在難轉(zhuǎn)染干細(xì)胞中的高效基因編輯能力(圖4)。

圖4. 使用ProteanFect?遞送PE7系統(tǒng)進(jìn)入iPSC進(jìn)行基因編輯

四、邁向高效與溫和的基因編輯新時(shí)代

隨著精準(zhǔn)醫(yī)學(xué)和細(xì)胞治療的快速發(fā)展,對(duì)多種功能細(xì)胞進(jìn)行高效基因編輯的需求正持續(xù)增長(zhǎng)。無(wú)論是免疫細(xì)胞(例如 T 細(xì)胞、NK 細(xì)胞、巨噬細(xì)胞)還是多能干細(xì)胞或造血干細(xì)胞,其在疾病建模、再生醫(yī)學(xué)和新型細(xì)胞療法開(kāi)發(fā)中都占據(jù)核心地位。而像 ProteanFect?這樣的創(chuàng)新遞送技術(shù),正在為這一廣闊領(lǐng)域注入新的活力。它不僅是一項(xiàng)技術(shù)進(jìn)步,更代表了一種研究范式的轉(zhuǎn)變——使我們能夠以更溫和、更高效的方式與細(xì)胞“對(duì)話”,在最大程度保持細(xì)胞功能與狀態(tài)的前提下,實(shí)現(xiàn)對(duì)基因組的精準(zhǔn)調(diào)控。

未來(lái)已來(lái),基因編輯的大門(mén)正因這些關(guān)鍵而細(xì)膩的技術(shù)突破越開(kāi)越大。對(duì)于每一位致力于免疫治療、基因工程與再生醫(yī)學(xué)的研究者而言,掌握一類(lèi)高效、安全且適用于多種難編輯細(xì)胞類(lèi)型的遞送工具,或許正是邁向下一代生物醫(yī)學(xué)發(fā)現(xiàn)與臨床轉(zhuǎn)化的第一步。

關(guān)于西湖凝聚體

西湖凝聚體生物是專(zhuān)注于核酸遞送領(lǐng)域的國(guó)家級(jí)高新技術(shù)企業(yè),已服務(wù)國(guó)內(nèi)外大量頂尖高校及科研機(jī)構(gòu)。我們成功研發(fā)了全球首個(gè)基于哺乳動(dòng)物內(nèi)源蛋白的凝聚體核酸遞送平臺(tái),為高效基因遞送提供了創(chuàng)新解決方案。

我們的首個(gè)產(chǎn)品 ProteanFect?轉(zhuǎn)染試劑系列,顯著提升了原代細(xì)胞和難轉(zhuǎn)染細(xì)胞系的基因遞送效率,助力全球科研工作者更高效便捷地開(kāi)展基因研究。同時(shí),我們正與全球藥企和生物技術(shù)公司緊密合作,開(kāi)發(fā)一系列前沿基因治療臨床產(chǎn)品。歡迎全球研究者和合作伙伴與我們攜手,共同推進(jìn)更創(chuàng)新、更高性能的基因遞送系統(tǒng)和產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)。

更多ProteanFect?系列產(chǎn)品信息

如果您對(duì)我們的產(chǎn)品、技術(shù)或合作機(jī)會(huì)感興趣,歡迎通過(guò)以下方式與我們?nèi)〉寐?lián)系。

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