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Nature?|?腸致病菌的免疫逃逸‘雙保險(xiǎn)’策略:抑制細(xì)胞焦亡并阻斷上皮細(xì)胞擠出

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撰文 | 阿童木

在人類和小鼠中,caspase-4及其同源物caspase-11是抵御革蘭氏陰性菌感染的關(guān)鍵先天免疫因子。它們能在細(xì)胞質(zhì)中直接感知細(xì)菌脂多糖(LPS),被激活后切割孔形成蛋白gasdermin D( GSDMD),促使其N端片段在質(zhì)膜上組裝成通道,最終引發(fā)一種以細(xì)胞溶解為特征的炎性細(xì)胞死亡——細(xì)胞焦亡(pyroptosis)【1, 2】。通過(guò)這種方式,宿主可迅速清除受感染細(xì)胞,剝奪病原體的復(fù)制生態(tài)位并限制其擴(kuò)散。

除LPS外,其他細(xì)菌組分如毒素或DNA可被炎癥小體復(fù)合物識(shí)別。炎癥小體的組裝招募并激活caspase-1,使其切割GSDMD并釋放IL-1β與IL-18,從而放大局部炎癥反應(yīng)【3】。這些機(jī)制構(gòu)成了上皮防御的“自毀屏障”,既能終止感染,也能警示鄰近細(xì)胞。

面對(duì)如此嚴(yán)密的宿主防線,許多病原體演化出復(fù)雜的免疫逃逸策略。志賀菌的E3連接酶IpaH7.8可降解GSDMD與GSDMB,從而阻斷焦亡;其效應(yīng)子OspC3則直接抑制caspase-4/11的活化【4】。類似機(jī)制也存在于鼠疫耶爾森菌的YopM與致病性大腸桿菌的NleA,它們通過(guò)干擾caspase-1抑制炎癥小體激活;NleF更能同時(shí)抑制caspase-4、-8和-9,協(xié)同封鎖焦亡與凋亡【5, 6】。通過(guò)這些策略,病原體在宿主體內(nèi)短暫建立“免疫豁免區(qū)”,為感染擴(kuò)散贏得時(shí)間。

然而,在腸道上皮這種高更新組織中,受感染細(xì)胞除了經(jīng)歷凋亡、焦亡或壞死性凋亡外,還可被鄰近健康細(xì)胞主動(dòng)“擠出”(extrusion)到管腔,從而為宿主提供額外一道物理防線【7】。盡管多種病原體被證明能抑制細(xì)胞死亡,但針對(duì)這一“擠出”過(guò)程所依賴的細(xì)胞骨架重塑機(jī)制,目前仍未發(fā)現(xiàn)能夠干擾該過(guò)程的毒力因子。

近日,Genentech公司Vishva M. Dixit與Giovanni Luchetti團(tuán)隊(duì),聯(lián)合俄勒岡健康與科學(xué)大學(xué)Isabella Rauch實(shí)驗(yàn)室等在

Nature
雜志發(fā)表了題為
Enteropathogenic bacteria evade ROCK-driven epithelial cell extrusion
的研究文章,揭示了腸致病性大腸桿菌利用一類HECT樣E3連接酶NleL,精準(zhǔn)削弱宿主兩道關(guān)鍵防線:一是靶向帶有LPS感知CARD結(jié)構(gòu)域的caspase-4/5/11并促其蛋白酶體降解,阻斷非經(jīng)典炎癥小體介導(dǎo)的焦亡;二是靶向ROCK1/2(依賴ROCK2的PH結(jié)構(gòu)域),抑制肌球蛋白輕鏈磷酸化與細(xì)胞骨架重塑,從而阻斷受感染上皮細(xì)胞的“擠出”。ΔnleL突變株誘發(fā)更強(qiáng)的細(xì)胞擠出并降低結(jié)腸定植,而在Rock1/2缺失的上皮中該差異消失,證明ROCK是NleL的關(guān)鍵靶點(diǎn)。


為確定其他毒力因子是否靶向宿主焦亡信號(hào),作者在人類類內(nèi)皮EA.hy926細(xì)胞中篩選了63種大腸桿菌效應(yīng)子,評(píng)估其阻斷LPS誘導(dǎo)焦亡的能力。作者發(fā)現(xiàn)僅NleL與NleF 能顯著抑制LPS誘導(dǎo)的細(xì)胞焦亡,表現(xiàn)為存活率上升和LDH釋放下降。野生型NleL具備完整的HECT樣E3連接酶活性,催化位點(diǎn)突變則無(wú)法抑制LPS誘導(dǎo)的細(xì)胞死亡,表明NleL的泛素連接酶活性對(duì)其抑制LPS誘導(dǎo)的細(xì)胞焦亡必不可少。 此外,NleL并不影響caspase-1/GSDMD途徑焦亡,提示NleL作用于非經(jīng)典炎癥小體上游。

通過(guò)定量質(zhì)譜鑒定NleL底物,作者發(fā)現(xiàn)NleL特異靶向caspase-4與ROCK2。NleL的催化活性可促使caspase-4(Lys87與Lys293)及ROCK2發(fā)生K48連接泛素化并被蛋白酶體降解,ROCK1豐度也同步下降;而其他caspase及已知底物如JNKs、IKKs均未受影響。免疫沉淀實(shí)驗(yàn)證實(shí)NleL直接結(jié)合并修飾caspase-4和ROCK1/2,且作用被蛋白酶體抑制劑阻斷。

接下來(lái)作者通過(guò)結(jié)構(gòu)-功能分析進(jìn)一步解析了底物識(shí)別機(jī)制,發(fā)現(xiàn)NleL通過(guò)識(shí)別caspase-4/5/11的LPS感知CARD結(jié)構(gòu)域完成泛素化。CARD結(jié)構(gòu)域互換實(shí)驗(yàn)表明,caspase-4的CARD可使caspase-1獲得對(duì)NleL的敏感性,而caspase-1的CARD則賦予耐受性。AlphaFold建模顯示,caspase-4的CARD缺乏死亡折疊蛋白典型的六股反平行α螺旋束結(jié)構(gòu),這一差異或解釋其被NleL特異識(shí)別的分子基礎(chǔ)。

ROCK1和ROCK2不含CARD結(jié)構(gòu)域,截短和片段刪除實(shí)驗(yàn)表明 NleL主要識(shí)別ROCK2的C端PH結(jié)構(gòu)域,該區(qū)域?qū)leL泛素化至關(guān)重要。純化的PH結(jié)構(gòu)域在體外即可被NleL修飾,而激酶結(jié)構(gòu)域無(wú)效。進(jìn)一步的互作分析顯示,NleL的PPR結(jié)構(gòu)域(Glu372–Gly486)介導(dǎo)與caspase-4結(jié)合,NEL結(jié)構(gòu)域則結(jié)合ROCK1。

在功能層面,NleL通過(guò)降解caspase-4和ROCK1/2,協(xié)同抑制焦亡與上皮細(xì)胞擠出。感染實(shí)驗(yàn)表明,ΔnleL菌株在Caco-2或腸上皮類器官單層中更加強(qiáng)烈地誘導(dǎo)ROCK底物MLC2磷酸化及腸上皮細(xì)胞的擠出?;铙w成像顯示,ROCK1/2可促進(jìn)焦亡細(xì)胞被推出上皮層。體內(nèi)實(shí)驗(yàn)中,ΔnleL的Citrobacter rodentium菌在小鼠結(jié)腸的定植顯著下降,脾臟擴(kuò)散受限;而在Rock1/2缺失的IEC小鼠中,野生型與ΔnleL菌株的定植無(wú)差異。與此同時(shí),ROCK缺失并未破壞上皮屏障完整性,證實(shí)ROCK1/2是NleL促進(jìn)感染的直接靶點(diǎn)。

綜上所述,本研究揭示了大腸桿菌HECT樣E3泛素連接酶NleL在感染過(guò)程中發(fā)揮了雙重作用:其一,通過(guò)靶向caspase-4/5/11削弱LPS感知與焦亡反應(yīng);其二,通過(guò)降解ROCK1/2關(guān)閉垂死細(xì)胞的擠出通道。兩條通路的共同抑制,使細(xì)菌得以逃脫上皮的“驅(qū)逐機(jī)制”,在腸道中建立穩(wěn)定定植。未來(lái)若能解析NleL與其底物的復(fù)合物結(jié)構(gòu),將揭示其識(shí)別與催化的分子邏輯,并為靶向效應(yīng)子-宿主互作的抗感染策略提供新思路。

https://doi.org/10.1038/s41586-025-09645-0

制版人: 十一

參考文獻(xiàn)

1. Shi, J. et al. Cleavage of GSDMD by inflammatory caspases determines pyroptotic cell death.Nature526, 660–665 (2015).

2. Kayagaki, N. et al. Caspase-11 cleaves gasdermin D for non-canonical inflammasome signalling.Nature526, 666–671 (2015).

3. Newton, K., Strasser, A., Kayagaki, N. & Dixit, V. M. Cell death.Cell187, 235–256 (2024).

4. Wang, C. et al. Structural basis for GSDMB pore formation and its targeting by IpaH7.8.Nature616, 590–597 (2023).

5. LaRock, C. N. & Cookson, B. T. The Yersinia virulence effector YopM binds caspase-1 to arrest inflammasome assembly and processing.Cell Host Microbe12, 799–805 (2012).

6. Yen, H., Sugimoto, N. & Tobe, T. Enteropathogenic Escherichia coli uses NleA to inhibit NLRP3 inflammasome activation.PLoS Pathog. 11, e1005121 (2015).

7. Rauch, I. et al. NAIP-NLRC4 inflammasomes coordinate intestinal epithelial cell extrusion with eicosanoid and IL-18 release via activation of caspase-1 and -8.Immunity46, 649–659 (2017).

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